






冷冻透射电镜(cryo-TEM)无需化学固定与染色,将样品快速浸入液态玻璃化冷冻,在液氮温度下成像;能保留外泌体天然结构(膜、内部成分),适合高分辨率三维重构(冷冻电子断层扫描 cryo-ET);缺点是设备昂贵、样品制备门槛高。
超薄切片 TEM外泌体经 / 双固定、脱水、树脂包埋后,切成 40–90 nm 超薄切片,染色后观察;适合观察细胞内多囊体释放外泌体的原位结构,或外泌体群体的内部细节。
扫描电镜(SEM)电子束扫描样品表面成像,主要看外泌体在基底上的分布与表面形貌;需喷金导电处理,分辨率略低于 TEM,不适合观察内部膜结构。
外泌体的形成与分泌遵循特定的生物学路径,源于细胞内多囊泡体与细胞膜的融合,其的脂质双层膜结构能够保护内部生物分子免受体液中核酸酶、蛋白酶的降解,确保其在复杂体液环境中保持稳定。外泌体的特性体现在两个方面:一是来源的广泛性,无论是正常细胞还是病变细胞(如细胞),均能分泌外泌体,且不同细胞来源的外泌体携带具有特异性的生物标志物;二是功能的多样性,外泌体可通过两种方式发挥生物学效应,外泌体检测浓度,要么通过直接融合或内吞作用将内容物送入,调控生物学行为,要么通过表面配体与受体的特异性结合信号通路,参与细胞增殖、分化、免疫逃逸等多种生理与病理过程,尤其在转移、血管生成、耐药等机制中发挥重要作用。

与扫描电镜不同,TEM需要将样品制备成超薄切片(厚度通常为50~100 nm)或直接将纳米级样品吸附在载样网上,确保电子束能够穿透样品。对于外泌体样品,通常采用负染法或正染法进行染色处理,以增强样品与背景的对比度,便于观察外泌体的形态和结构——负染法是利用高电子密度的重金属盐(如磷钨酸、醋酸铀)包裹外泌体表面,使背景呈现深色,外泌体呈现亮白色的“亮核暗晕”形态;正染法则是让重金属盐渗透到外泌体内部,使外泌体呈现深色的“暗核亮背景”形态,两种染色方法各有优势,可根据研究需求选择使用。
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